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瓊脂糖凝膠電泳的制備及核酸檢測
點擊次數:323 更新時間:2022-04-14

 一. 實驗目的

1、掌握瓊脂糖凝膠電泳的原理;

2、學習瓊脂糖凝膠電泳的操作。

二. 實驗原理

瓊脂糖是一種天然聚合長鏈狀分子,沸水中溶解,45℃開始形成多孔性剛性濾孔,凝膠孔徑的大小決定于瓊脂糖的濃度。

DNA分子在堿性環境中帶負電荷,在外加電場作用下向正極泳動。DNA分子在瓊脂糖凝膠中泳動時,有電荷效應與分子篩效應。不同DNA,其分子量大小及構型不同,電泳時的泳動率就不同,從而分出不同的區帶。瓊脂糖凝膠電泳法分離DNA,主要是利用分子篩效應,遷移速度與分子量的對數值成反比關系。

溴化乙錠(EB)未扁平狀分子,在紫外照射下發射熒光。EB可與DNA分子形成EB-DNA復合物,其發射的熒光強度較游離狀態EB發射的熒光強度大10倍以上,且熒光強度與DNA含量成正比。

三、儀器和試劑

儀器: 微量移液器,電泳儀,電泳槽,微波爐

試劑: 瓊脂糖:1.0%;電泳緩沖液(50 × TAE 電泳緩沖液取Tris24.2g ,冰/醋酸5.7ml , 0.25mol/L EDTA (pH8.0)20ml ,加蒸餾水至100ml ) EB:5 ?l / 100 ml TBE

電泳材料:標準分子量核酸(DL2000)

四. 操作步驟

(1)制膠(以20 mL為例)

a. 稱取0.2 g 瓊脂糖,加入20 ml 的1XTAE緩沖液(pH 8.0),搖勻;

b. 微波爐加熱,至瓊脂糖*溶解(要防止過熱溢出三角瓶);

c.將制膠板放入制膠槽中,插入適當的梳子,將溶解的瓊脂糖(約50℃)加入2ul EB后,混均勻,倒入其中,直至厚度為4~6 mm(如有氣泡要把氣泡趕出),在室溫下冷卻凝固(約30~ 45 min);

d.小心垂直向上拔出梳子,以保證點樣孔完好,將膠板置于電泳槽中。

(2)點樣

用微量移液器將5 ?l含藍色染液的 DL2000 加入點樣孔下部。

(3)電泳

打開電源開關,調節電壓至3~5 V/cm(約100 V),可見到溴酚藍條帶由負極向正極移動,約30-40分鐘后即可觀察結果。

(4)觀察

將電泳好的膠置于紫外透射檢測儀上,打開紫外燈,可見到橙紅色核酸條帶,根據條帶粗細,可粗略估計該樣品DNA的濃度。如同時有已知分子量的標準DNA進行電泳,則可通過線性DNA條帶的相對位置初步估計樣品的分子量。

五、實驗結果

點樣時效果較好的照片點出的白色熒光線比較亮,條帶粗細均勻;條帶沒有出現兩端粗中間細的情況

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