01、流式的染色條件？一般推薦室溫避光染色20分鐘，或4℃染色30分鐘。具體請參照抗體說明書。

02、流式抗體偶聯熒光素的方式？

包括直接標記和間接標記兩種。在條件允許的范圍內，盡量用直接標記的抗體。如果選擇了間接標記的抗體，一抗是純化的抗人的一抗，那么用純化的一抗和熒光標記的二抗。如：一抗是小鼠源的抗人的單克隆抗體，二抗則選抗小鼠的二抗（山羊抗小鼠或者兔抗小鼠等均可）。胞內因子染色，用直接標記熒光染料的抗體。

03、如果檢測的指標數目超過了流式細胞儀的通道，怎么辦？

如果需要做5個指標，而流式細胞儀只能做4個通道，可以將指標歸成2類，再將樣本分成2份，分別檢測。比如需要同時檢測CD3/CD4/CD8/IL-4/IFN-γ，那么將樣本分成兩份，第1份加CD3/CD4/CD8/IL-4，而第2份加CD3/CD4/CD8/IFN-γ。

04、什么是同型對照？和FMO區別是什么？

同型對照：用于確定抗體非特異性結合到細胞表面而產生的背景染色，主要是考慮了細胞的自發熒光、Fc受體介導的非特異性結合等因素。對流式不是非常熟悉，做流式胞內實驗，檢測指標的特異性不高等幾種情況下，必須搭配同型對照。

熒光扣除對照(Fluorescence Minus One, FMO):又稱染色缺一對照，在抗原表達弱或者多色實驗時（＞4色）使用，可以反映抗體組合中其他通道熒光的滲漏，確定陽性細胞的閾值，可作為設門的依據。

05、如何選擇同型對照？

與染色的單克隆抗體：

1）相同種屬來源

2）相同免疫球蛋白及亞型

3）相同熒光素標記

4）相同劑量和濃度

5）-好來自于同一家公司

06、流式設門要考慮哪些因素？

排除細胞碎片；進行死活鑒定；應用合適的陰性對照；分群不明顯的，根據同型對照和FMO圈出陽性比例；查閱文獻了解陽性比例。

07、Fc受體封閉

單核細胞、B細胞、DC細胞、NK、巨噬細胞、粒細胞、腫瘤細胞等高表達 FcR，在檢測這些細胞時，會與抗體的Fc段非特異性結合，產生假陽性信號。因此，流式檢測這些細胞時，推薦使用相應物種的血清或者商品化的Fc受體封閉劑。

08、7AAD單染管調節補償，如何猝死細胞？

一般是加熱65℃處理一分鐘。

09、流式抗體可以做免疫熒光嗎？

理論上是可以的。抗體的濃度需要自己去摸索，以流式抗體的用量為參考。對于表達弱的抗原，抗體標記的熒光強度不夠，需要選擇熒光強度高的染料。直接標記的流式抗體容易淬滅，建議染色后馬上在熒光顯微鏡下觀察結果。

10、什么是補償微球？

由于熒光光譜的重疊現象，在進行流式多色分析時，必須設置單染管進行熒光補償調節。對于初學者來說，補償調節是流式細胞術中比較難掌握的操作，尤其是遇到一些不太常見的指標，需要經驗豐富的流式操作者根據多年的經驗判斷來調節補償，才可以得到比較好的數據。

補償微球大小和淋巴細胞相當，可連接各種熒光標記的抗體來調節補償。可以像待測的樣本細胞一樣在相同的實驗條件下固定，破膜等，操作起來簡單方便，結果準確。克服了以往做三色以上的流式分析時補償難調，耗費樣本（往往用待測樣本單標來進行補償調節），專業要求高等缺點。

11、染色指數是什么？

染色指數（SI）可用于比較不同熒光染料在流式細胞術應用中熒光亮度的差異。該值通過使用陽性區域的平均熒光強度（MFI）減去陰性區域的平均熒光強度得到的差值，再除以兩倍的陰性區域標準差獲得。染色指數越大，熒光強度越高。進行抗體滴度的時候，根據染色指數來選擇-佳的抗體用量。

12、除PI之外，還有哪些常見的核酸染料？

1）7AAD，488nm激光器激發，用PerCP通道；

2）DAPI，藍色熒光染料，355和405nm激光器激發；

3）Hochest33342, 藍色熒光染料，355nm激光器激發。

13、胞內細胞因子檢測，如何處理細胞？

細胞因子必須被誘導分泌才可以用流式細胞術檢測到。常用的刺激劑包括PMA、ionomycin、LPS、CD3/CD28，同時加入莫能菌素和BFA阻斷劑，防止細胞因子分泌到胞外。刺激劑的種類，濃度和刺激時間都可以影響細胞因子分泌的水平。

14、為什么會產生高背景和噪音？

實驗中有噪音和高背景可能有以下幾個原因，如PMT電壓設置不當、死細胞和碎片干擾、熒光信號的溢漏，細胞具有較強的自發熒光等。

15、在單染管調節補償時候，為什么串聯染料不可以用相同熒光素不同標記來替代調補償？

串聯染料的抗體光譜不*相同，會導致錯誤的補償。