成功的ELISA方法的開發關鍵，在于對ELISA實驗中所使用的試劑耗材的選擇和搭配。

對試劑耗材的特性和多樣性的了解，有助于在不同的實驗需求中尋找合適的組合搭配中開發高質量的ELISA方法。

①酶標板材：

市面上提供的酶標板材基本都是多聚苯乙烯，產品線比較齊全的公司會對多聚苯乙烯材質的多種化學修飾以相對于包被的蛋白具有不同的特性。

一般的酶標板材的說明書上會根據高結合力（Highbinding），中結合力（mediumbinding）的維度進行劃分。

但筆者以多年的從業經驗出發，會更信任以親水，弱親水，未處理和疏水四個等級劃分酶標板材的類型和特性的酶標板材。

一般來說，酶標板材由親水到疏水，對蛋白的結合會由強逐漸變弱，這會帶來三個效果：

相同濃度的蛋白包被，結合能力強的比結合能力弱的材料可以在酶標板材上固定更多的蛋白，因為單孔親水板材的大吸附抗體量是220ng，而疏水板材只有100ng。

由親水到疏水，板材對包被蛋白的吸附效率提高的同時，其對ELISA反應過程中樣品蛋白、樣品溶液中的其他蛋白和酶聯抗體的非特異吸附的能力也會提高，從而造成非特異信號。

包被的蛋白作為一個大分子以一個表面吸附在酶標板材上，其表面在不同酶標板材上并不是大多數人想象中的隨機均勻的，有明顯的偏向性，會導致在不同的特性酶標板材上，包被蛋白與酶標板材的接觸表面不一樣，從而造成不同的位點被屏蔽的現象。如果這個位點恰好是與檢測樣品結合的位點，樣品將會因此無法被檢測到。

所以一個專注多樣化ELISA方法開發的實驗室應該準備多種不同特性的酶標板材以供選擇。

②包被液：

常用的包被液是PBS（pH 7.4）或者碳酸鈉-碳酸氫鈉溶液pH 9.6，pH和離子濃度會對包被的效率產生一定的影響，需根據包被蛋白的特性進行具體分析，包被蛋白溶液經過包被后也不會都吸附在酶標板材上，包被完成后大部分蛋白還是留在溶液中。

文獻中有記載蛋白溶于包被液后抽真空使包被蛋白以更高的密度吸附在酶標板材上的案例。

③封閉劑：

常用的封閉劑有3%BSA（w/v），5%脫脂奶粉（w/v）等。

封閉液的作用是覆蓋酶標板材包被蛋白占據位置以外的空間，以抵抗后續樣品或者樣品中的其他物質、酶聯抗體等對于板材直接的非特異吸附。

根據筆者多年的實踐經驗，封閉劑只能對成分簡單的樣品溶液起到較好的封閉作用但面對成分比較復雜的樣品溶液，封閉效果則會大打折扣。

有研究表明，封閉劑的封閉效果和封閉分子的大小成反比，所以如果傳統的封閉劑起不到很好的封閉效果，選用分子量更小的封閉劑（如：酪蛋白），可能會取得更好的封閉效果。

另外需特別注意：如果檢測體系是生物素-鏈霉親和素體系，千萬不要使用脫脂奶粉作為封閉劑——因為脫脂奶粉中含有生物素，會對檢測體系造成干擾。

④洗滌液/稀釋液：

常用的洗滌液是中性的緩沖液加上一定濃度的去污劑如PBST (0.05%(V/V) Tween-20 in PBS)。

稀釋液會在洗滌液中加入一定的封閉劑成分如0.5%BSA (W/V ) in PBST。

在一些體內樣品的檢測過程中，通常會在稀釋液中加入一定濃度的陰性血清，以使得不同稀釋度的樣品有相同的非特異背景。

⑤酶聯抗體：

酶聯抗體的種類很多，可根據抗體的作用位點分為特異性酶聯抗體和通用型酶聯抗體。

特異性酶聯抗體作用于特定蛋白的表位上。

通用型酶聯抗體則往往針對于多肽序列組成的標簽，生物素，特定種屬抗體的Fc端保守區域等。

常用的酶聯抗體標記的酶主要為AP（堿性磷酸酶）和HRP（辣根過氧化氫酶）。

酶聯抗體根據其抗體的成分可分為單抗酶聯抗體和多抗酶聯抗體。

其中多抗酶聯抗體的多抗成分一般是通過免疫兔或者山羊得到的，成分比較復雜，需格外注意其與ELISA體系中其他試劑的交叉反應。

酶聯抗體根據其抗體的分子量由大到小可分為全長的酶聯抗體、Fab片段酶聯抗體、scFv酶聯抗體。

分子量越小的酶聯抗體越有可能避免和樣品蛋白結合時可能存在的作用位點被空間阻礙的情況，但也進一步增加了酶聯抗體繞過封閉劑的阻斷與酶標板材進行非特異結合的風險。

⑥顯色液和酶標儀：

顯色液的選擇需與酶聯抗體的酶對應，也需和實驗室所具備的酶標儀對應。

如酶聯抗體偶聯的是HRP（辣根過氧化氫酶），可以采用TMB顯色液，用能夠進行吸光度讀數的酶標儀進行檢測；

或者Ampliflu™Red為底物，用能夠進行熒光讀數的酶標儀進行檢測；亦或采用QuantaRedADHP為底物，用能夠進行化學發光讀數的酶標儀進行檢測。

一般來說，ELISA方法的靈敏度會受到底物的檢測方法限制，化學發光底物能夠檢測的信號下限要優于熒光底物，再優于吸光度值底物。

即使是常用的TMB顯色液，很多供應商不同顯色強度的顯色液，可以根據方法開發過程的具體情況合理選擇顯色液。